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18 mars 2022
Pose d'un cathéter intraveineux périphérique chez le chien et le chat. Des complications dans un cas sur 2
La mise en place d'un cathéter intraveineux périphérique (CIVP) est souvent suivie de complications mécaniques, inflammatoires ou infectieuses, susceptibles de retentir sur la santé de l'animal, voire de compromettre ses chances de récupération.
Afin d'évaluer les risques de complications liés à la présence d'un CIVP, les auteurs de l'étude présentée ici ont suivi durant six mois les animaux pris en charge à la Faculté de médecine vétérinaire de Teramo (Italie) dont l'état justifiait la pose d'un cathéter. De mars à août 2018, 76 chiens et 40 chats ont ainsi fait l'objet d'une surveillance journalière.
La fréquence de la colonisation bactérienne du cathéter après son retrait (planifié ou forcé) a également été évaluée à cette occasion.
Au cours de l'étude italienne, les CIVP ont été placés au niveau de la veine céphalique chez 36 chats (90,0 %), de la veine saphène latérale chez deux chats (5,0 %) et de la veine saphène médiale chez deux autres chats (5,0 %). En ce qui concerne les chiens, cette proportion est respectivement de 71 animaux (93,4 %), 4 (5,3 %) et 1 (1,3 %).
Les poils ont été rasés et la peau désinfectée selon un protocole standardisé. Les cathéters, tous du même modèle, ont été fixés par plusieurs adhésifs et protégés par un pansement et une bande élastique. Pour chaque animal, les opérateurs ont évalué la facilité d'accès à la voie veineuse et les éventuels problèmes liés à son comportement. Ils ont également précisé si une sédation s'était avérée ou non nécessaire. Toutes les 12 heures, les animaux ont fait l'objet d'un examen général, avec évaluation du cathéter et de la zone environnante.
Les anomalies recherchées au niveau du CIVP étaient les pliures, les occlusions ou les déplacements, ainsi que les signes d'infiltration ou d'extravasation. Les marques d'inflammation et les symptômes précoces de phlébite ont également été évalués : douleur, érythème, gonflement, induration de la veine, hyperthermie. Après retrait du dispositif, le contenu de chaque cathéter a été recueilli pour mise en culture et antibiogramme.
Le dispositif a été retiré précocement pour cause de complications chez 43 % des chiens et 52 % des chats, soit 46,6 % des animaux.
Le temps médian avant le retrait du cathéter dans cette étude est de 25,5 heures (6 heures minimum et 156 heures maximum). Si ce délai est de 24 heures (6 à 132 heures) chez le chien, il atteint toutefois 48 heures (6 à 156 heures) chez le chat.
L'augmentation de la durée de conservation du cathéter chez le chien est ici statistiquement liée à celle du nombre de cas de phlébites. Les auteurs estiment la période optimale de remplacement du CIVP à 36 heures, ce qui correspond au passage d'un risque de phlébite absente à bénigne à celui de phlébite modérée à sévère.
En médecine humaine, les recommandations actuelles sont de procéder au remplacement du cathéter toutes les 48 à 72 heures en routine (recommandations Early Centers for Disease Control and Prevention). De récentes études suggèrent que l'allongement de cette période à 96 heures n'augmente pas le nombre de complications, mais réduit à la fois la gêne occasionnée au patient et le coût du matériel.
Chez le chien, une durée de conservation du cathéter supérieure à 48-72 heures est habituellement considérée comme un facteur de risque. Le délai de remplacement de 36 heures conseillé ici est beaucoup plus court, ce qui pourrait s'expliquer par la variabilité des profils des animaux inclus dans l'étude.
Aucune corrélation de ce type n'a été observée chez le chat.
Jusqu'ici, le sexe n'avait pas été identifié comme un facteur de risque, chez le chien comme chez le chat. Dans cette étude, le risque d'apparition de complications augmente pourtant significativement chez les chats mâles, peut-être en raison de la relative finesse de leur peau par rapport aux femelles.
Le risque de complications augmente également de façon significative chez le chat lorsque le cathéter est posé sans sédation. Ce phénomène, déjà observé au cours de précédents travaux sur les cathéters jugulaires intraveineux, s'explique sans doute par la sûreté et la précision apportée par la sédation, surtout chez les animaux stressés ou agressifs.
Des germes ont été identifiés dans 24 des 116 échantillons mis en culture après recueil du contenu des cathéters en fin d'utilisation (20,7 %, soit 20 % des chats et 21 % des chiens). Ce résultat est cohérent avec ceux des études précédentes, dans lesquelles les taux de contamination se situaient entre 10,7 et 39,6 %.
Huit des prélèvements positifs proviennent de chats (33,3 %) et 16 de chiens (66,7 %). Les germes identifiés chez le chien sont Pseudomonas aeruginosa (6 cas), Escherichia coli (3), Staphylococcus intermedius (3), Serratia marcescens (2), Acinetobacter baumannii/calcoaceticus (1) et Plesiomonas shigelloides (1) ; chez le chat, Enterobacter aerogenes (3 cas), Enterobacter cloacae (1), Pseudomonas aeruginosa (2), Serratia marcescens (1) et Acinetobacter baumannii/calcoaceticus (1).
Dix de ces isolats ont été classés comme multirésistants (résistants à trois classes d'antimicrobiens ou plus), soit 45 % des échantillons positifs. Chez le chat, 3 prélèvements sur 8 étaient multirésistants, contre 7 sur 16 chez le chien.
Même si la colonisation du matériel par des germes ne nuit pas forcément à l'animal, les auteurs jugent inquiétant le taux élevé de contaminations par des bactéries multirésistantes observé ici. Par leur respect des règles d'hygiène, les vétérinaires et leurs équipes ont donc un rôle important à jouer dans le domaine de la santé publique, en limitant la transmission de ces agents pathogènes au sein du cabinet ou de la clinique.
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